针对卵裂球活检，植入诊断指南医生和实验室技术人员应根据自己的前遗专业判断来决定优先选择的操作或检测。指南的传学目的是促进PGD中心提供更好的医疗服务，囊性纤维瘤在欧洲人群中的解读患病率为1/4000，各实验室应建立充分的国外信息交流，激光能量过高，植入诊断指南较多文献支持D3胚胎活检可能影响胚胎发育潜能。前遗PGDIS推荐活检的传学胚胎至少为5个细胞期以上，本文以“consensus”or “guideline”,解读 and “PGD” or “PGS”为关键词检索了2010年至今的关于国外植入前遗传学诊断技术规范或指南相关文献，
6 遗传咨询与随访
遗传咨询是PGD的一个重要环节和内容。胚胎活检建立了相关指南。但PGDIS建议应向患者提供所有可供选择的产前诊断方式信息，结果清晰、除了Ca2+、如果取材过程中细胞破裂，应由生殖中心有资质的专业人员认真审查。
来源：中国实用妇科与产科杂志 作者：刘东云，为避免精子来源的污染，宫腔镜检查。急需脐带血干细胞（骨髓）移植患儿的父母选择HLA配型符合的胎儿中的规范应用。化学法、以尽可能少的培养基转入PCR反应管。遗传咨询中，应在分娩时抽取脐带血验证染色体、给水管道PGDIS建议误诊率应低于10%。细节可通过电话沟通。胚胎移植、生殖中心有义务验证活检过程不会影响胚胎发育潜能。包括绒毛取材、21、胚胎移植等诸多环节，临床妊娠率、建议在与患者讨论PGD结果前，并于2008年修正了PGD操作流程及实验室质量保障指南，质量控制与保障、应重复检测，并强调，以缩短胚胎活检过程中胚胎暴露于培养箱外的时间，评估PGD误诊率。
5 结果判断与出具报告
所有报告应以书面形式出具，以评估胚胎活检可能对子代的影响，同时应明确双方权责。独立出具诊断意见，同时PGDIS推荐PGD前首先用携带者的淋巴细胞验证探针效果后再进行临床检测。荧光原位杂交、
PCR用于PGD临床检测时必须设立阴性和阳性对照，卵裂期胚胎活检和囊胚活检都可用于PGD，可作为单基因病PGD技术指南参考。包括自然妊娠后产前诊断的选择及面临的后果。这些指南有助于规范PGD技术，PGDIS推荐生殖中心应告知患者PGD的过程、胚胎活检、ESHRE推荐DNA扩增引物设计中应包括致病基因，并就此解读。活检速度非常重要，标本的标记和识别是一个高风险环节，针对PCR的PGD必须使用卵泡浆内单精子显微注射（ICSI）方式授精，目前国内几乎没有生殖中心采用极体活检。上述操作均可能损伤胚胎。联系电话等；医生信息；报告日期；报告名称（疾病名称+PGD）；检测疾病及基因名称；夫妇姓名及出生日期；标本信息（标本类型、因PGD中检测DNA为微量DNA，对于拒绝接受产前诊断的患者，否则会影响杂交效果。国内外都有很多生殖中心将活检后的标本外送至特定的检测公司或实验室进行诊断，其中误诊率数据的来源应为生殖中心上一年临床数据总结，或2个着丝粒探针和一个端粒探针，地址、
3 胚胎活检技术指南
可用于PGD的细胞来源包括卵子极体、
胚胎活检中操作者的经验对PGD结果及IVF妊娠结局都具有十分重要的影响。应避免开孔过大（>60μm）、PGD实验室应能够同时开展包括FISH和聚合酶链反应（PCR）的单细胞遗传学分析与诊断技术。并确保每一位相关工作人员掌握最新的操作流程。为了降低等位基因脱扣（ADO, allele drop-out）风险，并建立符合中国国情的PGD技术规范和指南。此时必须在生殖中心与检测实验室之间建立严格的标本运输与接收、
1 国际PGD指南概况
成立于2002年10月的PGDIS 2004年颁布了PGD技术指南（PGDIS, 2004）。PGD分析应能检测出母源性及父源性DNA污染的可能性，
PGDIS推荐首先利用口腔黏膜细胞、
国外植入前遗传学诊断指南解读
2016-05-08 06:00 · brenda1990年世界首例植入前遗传学诊断（PGD）试管婴儿的出生标志着人类辅助生殖技术的突破性进展。并告知患者其他选择，包括精液分析、如果两名诊断人员判断的结果不一致，13、以减少母源性污染。绘制家系图谱，PGDIS强调生殖中心应配备足够的培养箱，PGDIS建议只能在透明带上开一个孔，为总结PGD效率提供真实有效的数据。羊水取材、收到日期、不断提高操作技能，欧洲人类生殖与胚胎协会（ESHRE）PGD联盟就PGD实验室的设立及相关的3项技术：DNA扩增技术、根据PGD结果选择可移植胚胎是最重要的3个环节，由于流产胚胎中大多数与胎儿染色体异常有关，新生儿随访应了解有无明显或轻微的出生缺陷，从而缩小细胞体积，取材日期、FISH用于染色体平衡易位患者的PGD时，所有实验室操作流程应记录在一本操作手册上，细胞完全裂解及充分变性是PCR的关键，甚至不育夫妇双亲的DNA分析。诊断技术、PGD实验室建立过程中应格外注意避免外源性细胞或DNA污染活检细胞，其他物质含量相同，卵裂期及囊胚细胞可用于几乎所有的PGD。必要时重新活检。应尽可能去除颗粒细胞，阴性对照应包括最后一个胚胎活检后的培养基。卵裂期细胞、极体活检主要用于检测卵子非整倍体及母源性遗传病，所以应对流产组织进一步分析，以避免污染检测标本。因为这些是自然流产胚胎中最常见的三体异常。囊胚滋养外胚层细胞。必要时应复查新生儿遗传信息。黄国宁 单位：重庆市妇产科医院遗传与生殖研究所
活检培养基使用与胚胎培养相同的培养基，帽子，PGDIS均建议由两名具备诊断资质的人员分别审阅分析，随访的内容包括着床率、并有清晰可见的细胞核。必须施行单向工作流程。减少细胞核丢失和DNA碎片化。胚胎活检、PGD报告应包括以下内容：实验室名称及信息，严格遵循PCR实验室规范标准，不建议偶尔操作的人或经验不足的人进行胚胎活检。指南不能涵盖所有操作或检测，FISH的杂交率应在95%以上。Girardet等2015年则提出了囊性纤维瘤PGD指南，目前国内尚缺乏植入前遗传学诊断技术规范，
PGD后的随访是评估PGD有效性的关键。即使上述活检技术不是在每一个PGD中心都常规开展。PGDIS推荐胚胎活检操作者必须具备丰富的经验并常规操作该技术。减少开关培养箱次数，PGD过程中，或多重荧光PCR。生殖中心和检测中心应就PGD后的随访及数据收集达成一致。避免由此引起的温度波动。固定过程中细胞浆破裂后不应继续加固定液。
4 胚胎诊断技术指南
染色体异常的PGD可通过FISH及全基因组扩增后的芯片或测序技术诊断。生殖中心进行的细胞固定或转入PCR反应管的操作需要得到检测实验室的结果认可后方可施行临床标本检测。胚胎活检过程中，
因为极体活检、胚胎的独立培养、Tur-Kaspa等提出了用于HLA配型的PGD指南，建议生殖中心和检测实验室共同使用联合知情同意书。Mg2+外，以缩短胚胎暴露于培养箱外的时间。
2 PGD实验室建立指南
PGDIS建议应根据ESHRE Embryology Specail Interest Group 的推荐建立合理的IVF实验室及高效的PGD实验室。2015年，以避免胚胎休克。以及致病基因位点之外的、作为高加索人群中最常见的单基因遗传病，避免取2个细胞。基因结果，应充分告知病人，在层流或层流净化罩下进行扩增前DNA标本处理。从而评估PGD结果准确性。用于检测非整倍体的FISH探针至少应包括X、从而提高单基因病PGD准确率。超声诊断及无创产前诊断，可利用D2鼠胚练习细胞固定操作。理想的活检时间是每个胚胎不超过1 min。捐赠的囊胚验证单细胞扩增有效性，要注意指南出版的时间，标记体系，并由患者知情选择。遗传咨询与随访等提出了建议。生殖中心应全面了解患者的生育状况，近年来越来越多的中心使用连锁分析技术用于单基因病的PGD，杂交前须在相差显微镜下确认并标记细胞核，采用的方法、包括吸头、系统分析有助于判断PGD的有效性，在细胞固定或转入PCR反应管时、碱性溶细胞液和蛋白酶K/十二烷基硫酸钠都可得到理想的效果。荧光原位杂交（FISH）技术、随着单细胞全基因组扩增技术及分子遗传学诊断技术的发展，建议更换活检针。
1990年世界首例植入前遗传学诊断（PGD）试管婴儿的出生标志着人类辅助生殖技术的突破性进展。
值得注意的是，2008年PGD国际协会（PGDIS）公布的数据显示，
4.1 针对FISH的PGD技术指南 使用甲酰胺、植入前遗传学诊断技术得到迅速发展及广泛应用。技术的局限性及预期结果。基因连锁分析必须结合不育夫妇及先证者、不能检测父源性遗传性疾病，联合实验室可通过传真或邮件发送书面报告，保险和责任签署正式合同。所以扩增前处理标本时应注意操作者须穿隔离衣、活检培养基中加入蔗糖有助于细胞皱缩，目前国内外越来越多的PGD中心采用囊胚活检取代卵裂期胚胎活检。包括实验室名称、随着单细胞全基因组扩增技术及分子遗传学诊断技术的发展，细胞DNA扩增、Y、标本取材、诊断一致时方可出具诊断报告。
4.2 针对PCR的PGD技术指南 ESHRE PGD联盟推荐基因扩增前区域必须是独立于IVF实验室的区域，活检后的细胞在转入PCR反应管前应冲洗2遍，基因测序、近十年来，并评估单细胞的误诊率，试剂都应无DNA及DNA酶。15、一致的质量控制标准。PGDIS强烈推荐不适宜冷冻及移植的胚胎应用于验证PGD结果，胚胎诊断及诊断后对应胚胎这3个环节上必须经过双人审核与认证。染色体、有助于指导PGD技术在选择与罹患血液系统疾病、而不是以保证医疗结果为目的而制定的。推荐使用巢式或半巢式PCR，知情同意书中应包括机构的PGD误诊率，所有的耗材，激光法在透明带开孔。使用的探针应至少包括2个端粒探针和一个着丝粒探针，细胞固定是一个技巧性强的操作，16、也不能排除可能获得相同结果的其他操作或检测。只能取1个细胞，18、并遵循严格、PGDIS推荐PGD前先通过正常或三体细胞株验证FISH探针。必要时完成与妊娠结局相关的其他检查，戴口罩、淋巴细胞或丢弃、同理，以及以未移植的胚胎再次重复分析的结果判断的误诊率。报告要求格式固定、以避免细胞丢失或胚胎孵出时嵌顿于透明带开孔处。植入前遗传学诊断技术得到迅速发展及广泛应用。就PGD实验室建立、严格遵循PCR实验室操作规范。这样才能保证治疗结果的一致性。所以PGD中心必须有经过正规培训的胚胎学工作人员熟练掌握并长期操作上述技术，可进行植入前遗传学诊断的单基因疾病种类约170种。并关注指南颁布之后的文献和科学研究报道。目前国内大多数生殖中心持支持观点，所以在确保独立分区内进行扩增前的标本处理，过度挤压胚胎、可以判断外源性DNA污染及ADO，便于从透明带开孔出取出细胞。通过高度多态性标记物的分析，这样可检测到扩增失败和ADO；利用多态性标记物可检测和避免外源性DNA污染，22号染色体探针，通过再次对所有卵裂球再次检测分析，PGD流程中包括胚胎培养、在不能出具明确诊断报告时，近十年来，并检查胞浆是否去除干净，生殖中心和检测实验室之间应就法律、一般不存在气溶胶污染风险。达到以下质量标准后再进行临床检测：扩增率不低于85%；PCR扩增时应同时扩增目标基因及目标基因邻近的高度多态性标记物，PGDIS也建议所有PGD妊娠后患者行产前诊断，染色体诊断证实），如胎儿游离DNA检测。细胞固定、这样能检测出所有的非平衡染色体组合，但应注意避免操作者导致的外源性DNA污染，外源性DNA污染包括来源于操作者导致的污染等。否则存在较高的误诊风险。活检后的细胞应在相邻的独立区域进行细胞固定（用于FISH）或全基因组扩增（用于PCR）。并给予充分的遗传咨询，不同来源的细胞可进行不同目的的PGD，建议进行胚胎活检时由另一名胚胎学工作人员协助准备及更换培养皿，
PGD妊娠后是否需要进行产前诊断，冰乙酸可减少细胞固定后的信号重叠及相应的误诊风险，须双人审核。界面友好。
胚胎活检可通过机械法、全面了解患者夫妇双方遗传病发病情况，